Библиография

1. 1. Бабийчук Л. А., Михайлова О. А., Зубов П. М., Рязанцев В. В. 2013. Оценка стадий апоптоза и распределения фосфатидилсерина в мембране ядросодержащих клеток пуповинной и периферической крови при различных технологиях криоконсервации. Гены и клетки. Т. 8. № 4. С. 50. (Babijchuk L. A., Mykhailova O. O., Zubov P. M., Ryazantsev V. V. 2013. Evaluation of apoptosis stages and posphatidylserine distribution in membrane of cord and peripheral blood nucleated cells at various cryopreservation protocols. Genes and Cells. V. 8. P. 50.) https://doi.org/10.23868/gc121610
2. 2. Ващенко В. И., Чухловин А. Б., Петренко Г. И., Вильянинов В. Н., Багаутдинов Ш. М. 2015. Действие факторов замораживания на изменения внутриклеточного метаболизма при криоконсервации костного мозга человека. Вестник MAX. Т. 4. С. 91. (Vashchenko V. I., Сhuklovin A. B., Petrenko G. I., Vilyaninov V. N., Bagautdinov Ch. M. 2015. Impact of preserving agents upon on intracellular meтaboliс changes during cryoconservation of human bone marrow. J. IAR. V. 4. P. 91.)
3. 3. Кит О. И., Гненная Н. В., Филиппова С. Ю., Чембарова Т. В., Лысенко И. Б., Новикова И. А., Розенко Л. Я., Димитриади С. Н., Шалашная Е. В., Ишонина О. Г. 2023. Криоконсервация гемопоэтических стволовых клеток периферической крови в трансплантологии: современное состояние и перспективы. Кардиоваск. терапия и профилактика. Т. 22. № 11. С. 124. (Kit O. I., Gnennaya N. V., Filippova S. Yu., Chembarova T. V., Lysenko I. B., Novikova I. A., Rozenko L. Ya., Dimitriadi S. N., Shalashnaya E. V., Ishonina O. G. 2023. Cryostorage of peripheral blood hematopoietic stem cells in transplantology: current status and prospects. Cardiovascular Ther. Prevention. V. 22. P. 124.) https://doi.org/10.15829/1728-8800-2023-3691
4. 4. Нельсон Д., Кокс М. 2014. Основы биохимии Ленинджера. М.: БИНОМ. Лаборатория знаний. 636 с. (Nelson D. L., Cox M. M. 2014. Lehninger principles of biochemistry. M.: BINOM. Laboratory of knowledge. 636 p.)
5. 5. Савилова А. М., Чулкина М. М., Алексеев Л. П. 2013. Сравнительное исследование экспрессии мРНК интерлейкина-2 и рецептора интерлейкина-2α в лимфоцитах, активированных ФГА и КонА. Иммунология. Т. 34. № 2. С. 76. (Savilova A. M., Chulkina M. M., Alexeev L. P. 2013. Comparative investigation of interleukin-2 and interleukin-2 receptor alpha mRNA expression in lymphocytes activated by PHA or ConA. Immunol. V. 34. P. 76.)
6. 6. Anderson J., Toh Z. Q., Reitsma A., Do L. A.H., Nathanielsz J., Licciardi P. V. 2019. Effect of peripheral blood mononuclear cell cryopreservation on innate and adaptive immune responses. J. Immunol. Methods. V. 465. P. 61. https://doi.org/10.1016/j.jim.2018.11.006
7. 7. Chakraborty S., Khamaru P., Bhattacharyya A. 2022. Regulation of immune cell metabolism in health and disease: Special focus on T and B cell subsets. Cell Biol. Int. V. 46. P. 1729. https://doi.org/10.1002/cbin.11867
8. 8. Desdin-Mico G., Soto-Heredero G., Mittelbrunn M. 2018. Mitochondrial activity in T cells. Mitochondrion. V. 41. P. 51. https://doi.org/10.1016/j.mito.2017.10.006
9. 9. Fu Y., Dang W., He X., Xu F., Huang H. 2022. Biomolecular pathways of cryoinjuries in low-temperature storage for mammalian specimens. Bioengineering (Basel). V. 9. P. 545. https://doi.org/10.3390/bioengineering9100545
10. 10. Gaber T., Chen Y., Krauss P. L., Buttgereit F. 2019. Metabolism of T Lymphocytes in health and disease. Int. Rev. Cell Mol. Biol. V. 342. P. 95. https://doi.org/10.1016/bs.ircmb.2018.06.002
11. 11. Gualtieri R., Kalthur G., Barbato V., Di Nardo M., Adiga S. K., Talevi R. 2021. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress caused by cryopreservation in reproductive cells. Antioxidants (Basel). V. 10. Art. ID: 337. https://doi.org/10.3390/antiox10030337
12. 12. Haider P., Hoberstorfer T., Salzmann M., Fischer M. B., Speidl W. S., Wojta J., Hohensinner P. J. 2022. Quantitative and functional assessment of the influence of routinely used cryopreservation media on mononuclear leukocytes for medical research. Int. J. Mol. Sci. V. 23. Art. ID: 1881. https://doi.org/10.3390/ijms23031881
13. 13. Len J. S., Koh W. S.D., Tan S. X. 2019. The roles of reactive oxygen species and antioxidants in cryopreservation. Biosci. Rep. V. 39. Art. ID: BSR20191601. https://doi.org/10.1042/BSR20191601
14. 14. Lomsadze G., Gogebashvili N., Enukidze M., Machavariani M., Intskirveli N., Sanikidze T. 2011. Alteration in viability and proliferation activity of mitogen stimulated Jurkat cells. Georgian Med. News. V. 9. P. 50.
15. 15. Makowski L., Chaib M., Rathmell J. C. 2020. Immunometabolism: from basic mechanisms to translation. Immunol. Rev. V. 295. P. 5. https://doi.org/10.1111/imr.12858
16. 16. Martikainen M. V., Roponen M. 2020. Cryopreservation affected the levels of immune responses of PBMCs and antigen-presenting cells. Toxicol. In Vitro. V. 67. Art. ID: 104918. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2020.104918
17. 17. Mas-Bargues C., Garcia-Dominguez E., Borras C. 2022. Recent approaches to determine static and dynamic redox state-related parameters. Antioxidants (Basel). V. 11. Art. ID: 864. https://doi.org/10.3390/antiox11050864
18. 18. Patel C. H., Leone R. D., Horton M. R., Powell J. D. 2019. Targeting metabolism to regulate immune responses in autoimmunity and cancer. Nat. Rev. Drug Discov. V. 18. P. 669. https://doi.org/10.1038/s41573-019-0032-5
19. 19. Patil N. K., Bohannon J. K., Hernandez A., Patil T. K., Sherwood E. R. 2019. Regulation of leukocyte function by citric acid cycle intermediates. J. Leukoc. Biol. V. 106. P. 105. https://doi.org/10.1002/JLB.3MIR1118-415R
20. 20. Starkov A. A. 2008. The role of mitochondria in reactive oxygen species metabolism and signaling. Ann. N. Y. Acad. Sci. V. 1147. P. 37. https://doi.org/10.1196/annals.1427.015