ОБНЦитология Cell and Tissue Biology

  • ISSN (Print) 0041-3771
  • ISSN (Online) 3034-6061

IN OVO - МЕТОД ВЫДЕЛЕНИЯ ПЕРВИЧНЫХ ЗАРОДЫШЕВЫХ КЛЕТОК ИЗ ЭМБРИОНАЛЬНОЙ КРОВИ ГЕНОФОНДНЫХ ПОРОД КУР

Код статьи
S30346061S0041377125020057-1
DOI
10.7868/S3034606125020057
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 67 / Номер выпуска 2
Страницы
111-118
Аннотация
Несмотря на ключевую роль примордиальных зародышевых клеток (ПЗК) в направленном изменении генома, существуют значительные трудности с эффективностью их выделения. В настоящей работе представлен новый метод (in ovo - внутри яйца) выделения из эмбриональной крови генофондных пород кур, который имеет важное значение для сохранения генетических ресурсов птиц и создания новых инновационных инструментов в области биотехнологии. ПЗК выделяли из крови эмбрионов кур различных пород (5 пород, 192 четырехсуточных эмбриона) и далее оценивали способность их к культивированию в течение 20 сут. Для анализа эффективности метода были проведены эксперименты по отбору проб крови у 192-х эмбрионов исследуемых пород кур и дальнейшее культивирование ПЗК. Результаты оценивали с применением однофакторного дисперсионного анализа ANOVA. Выявлено, что эффективность отбора образцов зависит от массы яйца и породы. Самый высокий показатель эффективности выделения ПЗК демонстрировали яйца китайской шелковой породы (89.5 %). Анализ данных культивирования ПЗК показал увеличение пролиферации клеток к 20-м сут. Наибольшую выживаемость наблюдали у китайской шелковой породы (69.1±2.56 %), у кур пород царскосельская (68.78±3.39 %) и род-айленд (67.9±2.2 %). Результаты показали пригодность метода in ovo для выделения ПЗК из 4-суточных эмбрионов кур и его большую эффективность, в отличие от методов, описанных в литературе.
Ключевые слова
метод in ovo выделение ПЗК генофондные породы кур культивирование пролиферация
Дата публикации
02.06.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
52

Библиография

  1. 1. Баркова О. Ю., Ларкина Т. А., Крутикова А. А., Пегливанян Г. К. 2023. Идентификация примордиальных зародышевых клеток (РGС) кур пушкинской породы с помощью ПЦР в реальном времени. Птицеводство. № 1. С. 10-15
  2. 2. Крутикова А. А., Пегливанян Г. К. 2025. Способ получения примордиальных половых клеток птиц. Патент № 2832977 C1, Российская Федерация, МПК C12N5/07, C12N5/10, C12N5/16.
  3. 3. Пегливанян Г. К., Ларкина Т. А., Рейнбах Н. Р., Полтева Е. А., Дысин А. П., Рябова А. Е., Азовцева А. И., Крутикова А. А. 2024. Особенности криоконсервации и декриоконсервации примордиальных половых клеток пушкинской породы кур. Биотехнология. 2024. Т. 40. № 5. С. 29.
  4. 4. Challagulla A., Jenkins K. A., O’Neil T.E., Morris K. R., Wise T. G., Tizard M. L., Bean A. G.D., Schat K. A., Doran T. J. 2023. Germline engineering of the chicken genome using CRISPR/Cas9 by in vivo transfection of PGCs. Animal Biotechnol. V. 34. P. 775-784. https://doi.org/10.1080/10495398.2020.1789869
  5. 5. Chojnacka-Puchta L., Sawicka D., Lakota P., Plucienniczak G., Bednarczyk M., Plucienniczak A. 2015. Obtaining chicken primordial germ cells used for gene transfer: in vitro and in vivo results. J. Applied Genetics. V. 56. P. 493. https://doi.org/10.1007/s13353-015-0276-7
  6. 6. Fujimoto T., Ukeshima A., Kiyofuji R. 1976. The origin, migration and morphology of the primordial germ cells in the chick embryo. Anat. Record. V. 185. P. 139. https://doi.org/1002/ar.1091850203
  7. 7. Han J. Y., Park Y. H. 2018. Primordial germ cell-mediated transgenesis and genome editing in birds. J. Animal Sci. Biotechnol. V. 9. P. 1. https://doi.org/10.1186/s40104-018-0234-4
  8. 8. Han J. Y., Park T. S., Hong Y. H., Jeong D. K., Kim J. N., Kim K. D., Lim J. M. 2002. Production of germline chimeras by transfer of chicken gonadal primordial germ cells maintained in vitro for an extended period. Theriogenology. V. 58. P. 1531. https://doi.org/10.1016/S0093-691X (02)01061-0
  9. 9. Houston D. W., King M. L. 2000. A critical role for Xdazl, a germ plasm-localized RNA, in the differentiation of primordial germ cells in Xenopus. Development. V. 127. Art. ID: 447. https://doi.org/10.1242/dev.127.3.447
  10. 10. Kang S. J., Choi J. W., Park K. J., Lee Y. M., Kim T. M., Sohn S. H., Han J. Y. 2009. Development of a pheasant interspecies primordial germ cell transfer to chicken embryo: Effect of donor cell sex on chimeric semen production. Theriogenology. 2009. V. 72. P. 519. https://doi.org/10.1016/j.2009.04.007
  11. 11. Kong L., Qiu L., Guo Q., Chen Y., Zhang X., Chen B., Chang G. 2018. Long-term in vitro culture and preliminary establishment of chicken primordial germ cell lines. PLoS One. V. 13. Art. ID: e0196459. https://doi.org/10.1371/0196459.
  12. 12. Lee H. C., Choi H. J., Lee H. G., Lim J. M., Ono T., Han J. Y. 2016. DAZL expression explains origin and central formation of primordial germ cells in chickens. Stem Cells Devel. V. 25. P. 68-79. https://doi.org/10.1089/scd.2015.0208
  13. 13. Macdonald J., Glover J. D., Taylor L., Sang H. M., McGrew M.J. 2010. Characterisation and germline transmission of cultured avian primordial germ cells. PloS one. V. 5. Art. ID: e15518. https://doi.org/10.1371/0015518
  14. 14. Maegawa S., Yasuda K., Inoue K. 1999. Maternal mRNA localization of zebrafish DAZ-like gene. Mech. Devel. V. 81. P. 223. https://doi.org/10.1016/S0925-4773 (98)00242-1
  15. 15. Mathan, Zaib G., Jin K., Zuo Q., Habib M., Zhang Y., Li B. 2023. Formation, application, and significance of chicken primordial germ cells: Rev. Animals. V. 13. Art. ID: 1096. https://doi.org/10.3390/13061096
  16. 16. Ono T. Exo ovo culture of avian embryos. 2000. Dev. Biol. Protocols. V. I. P. 39. https://doi.org/10.1385/1-59259-685-1:39
  17. 17. Perry M. M. 1988. A complete culture system for the chick embryo. Nature. V. 331. P. 70.
  18. 18. Petitte J. N., Mozdziak P. E. 2014. Production of transgenic poultry. In: Transgenic Animal Technol.: Elsevier. P. 335. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-410490-7.00012-8
  19. 19. Rengaraj D., Won S., Han J. W., Yoo D., Kim H., Han J. Y. 2020. Whole-transcriptome sequencing-based analysis of DAZL and its interacting genes during germ cells specification and zygotic genome activation in chickens.Int. J. Mol. Sci. V. 21. Art. ID: 8170. https://doi.org/10.3390/ijms21218170
  20. 20. Tsunekawa N., Naito M., Sakai Y., Nishida T., Noce T. 2000. Isolation of chicken vasa homolog gene and tracing the origin of primordial germ cells. Development. V. 127. P. 2741. https://doi.org/10.1242/dev.127.12.2741
  21. 21. Zhang X., Xian R., Fu Y., Dai Y., Peng R. 2023. A novel, efficient method to isolate chicken primordial germ cells from embryonic blood using cell culture inserts. Animals, V. 13. Art. ID: 3805. https://doi.org/10.3390/13243805
  22. 22. Yasuda Y., Tajima A., Fujimoto T., Kuwana T. 1992. A method to obtain avian germ-line chimaeras using isolated primordial germ cells. J. Reprod. Fert. V. 96. P. 521. https://doi.org/10.1530/jrf.0.0960521
  23. 23. Whyte J., Glover J. D., Woodcock M., Brzeszczynska J., Taylor L., Sherman A., Kaiser P., McGrew M.J. 2015. FGF, insulin, and SMAD signaling cooperate for avian primordial germ cell self-renewal. Stem Cell Reports. V. 5. P. 1171. https://doi:10.1016/.2015.10.008
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека